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在食用菌誘變育種中，一般選擇單核孢子進行誘變處理。如果菌絲細胞内含有2個以上的核，由于基因突變具有随機性和獨立性，各個細胞核不可能同時發生相同的基因突變，在其後代中就會出現不一緻的菌落，且細胞核之間可能存在相互作用，影響突變性狀的穩定，一般都不選擇單核菌絲或雙核菌絲作為誘變材料。

木碗蘑菇

在誘變處理食用菌單核孢子時，最好使單細胞的孢子處于懸浮狀态，均勻分布在懸浮液中。采用物理誘變時，一般用生理鹽水配制懸浮液即可。如果采用化學誘變劑進行處理，考慮到誘變劑可能引起pH改變，從而産生各種不同的效應，通常須使用緩沖液配制孢子懸浮液。食用菌孢子懸浮液的濃度應控制在105個/L左右，懸浮液中孢子數可用平皿稀釋計數法、光吸收法或血細胞計數闆進行測定，最好先測定孢子中的活孢子數。可以同時測定不同濃度的孢子懸浮液的細胞數和光吸收值，制定标準曲線，以後隻測定光吸收值，就可從标準曲線上查出活孢子數。

在托盤上的新鮮白蘑菇 （牛肝菌）

在物理誘變中，使用紫外光誘變成本低廉，對人體損害較小，誘變效果也較好，是最常用的物理誘變方法之一。常用化學誘變劑分為2類：一類是烷化劑，常用烷化劑有甲基磺酸乙酯、亞硝基胍、乙基磺酸乙酯和芥子氣等；另一類是堿基類似物，常用堿基類似物有5-溴尿嘧啶和2-氨基嘌呤。對不同的食用菌誘變材料而言，最合适的誘變劑和誘變條件不同，同一誘變劑對不同食用菌材料的誘變效應也不一樣。一般而言，對同一個菌株采用不同的誘變劑進行多次誘變處理，誘變效果好于使用同一種誘變劑進行多次誘變處理。

食用菌栽培

殺菌率常用來表示各種誘變劑的相對劑量。誘變既可能産生正向突變，使食用菌産量、品質等性狀得到改善，也可能産生負向突變。适宜的劑量應該是在确保産生高誘變率的基礎上，盡可能促使變異向正向突變範圍移動，這需要經過多次試驗進行反複摸索。近年來對紫外光、X射線和乙烯亞胺等誘變效應的研究發現，使用偏低的劑量時正向突變較多地出現，使用偏高的劑量時負向突變較多地出現。在進行紫外線誘變時，常采用殺菌率高達99.9％99.9％的劑量，近年來傾向于采用殺菌率為70％~75％的劑量，甚至更低的劑量。

種植的蘑菇

1.物理誘變物理誘變通常在專門的設備上進行操作，研究人員隻需将準備好的樣品交給操作人員，并提出需要的照射劑量即可。一般在暗室的誘變箱或接種箱中安裝15W紫外燈管，誘變前先打開紫外燈預熱20min，使光波穩定。将10~12mL孢子懸浮液移入直徑9cm的培養皿中，打開培養皿蓋，将孢子懸浮液置于紫外燈管下方30cm處，照射時間為0.5~5min。将照射處理後的孢子懸浮液稀釋後塗平闆，或加入培養基增殖培養後再塗平闆，但增殖培養時必須用黑紙包住培養器皿。整個誘變操作過程須在紅光下進行，孢子萌發培養時也應注意避光。

器皿裡的食用菌

2.化學誘變化學誘變劑處理後，必須及時終止反應。可以用大量稀釋的方法終止誘變劑的作用，也可用解毒劑來終止。例如采用甘氨酸解除氮芥的作用，采用硫代硫酸鈉終止硫酸二乙酯的作用，也可以采用提高pH來終止亞硝酸等酸性誘變劑的作用。采用甲基磺酸乙酯誘變處理食用菌孢子時，常用濃度為0.1~0.4molL。先将食用菌孢子懸浮在0.1mol/LpH7.0的磷酸鹽緩沖液中，孢子濃度10個/mL；再取9mL孢子懸浮液，加入濃度為1.5moL的甲基磺酸乙酯溶液1mL，搖勻後靜置保溫3~6h，也可适當延長或縮短時間。最後進行離心、洗滌，稀釋，塗平皿，或加入培養基培養過夜後，再塗平闆，從長出的菌落中逐步篩選優良突變子。

白色的夏天牛肝菌

孢子經誘變和培養長出菌落之後，及時挑出單個菌落，進行突變體篩選。對于同宗結合真菌的擔孢子，可以将挑出的單個菌落移至試管斜面上，直接進行農藝性狀考察。于誘變材料是單核孢子，異宗結合真菌的擔孢子萌發的菌絲體通常都是同核體。對于異宗結合真菌而言，誘變獲得的單核體菌株隻能作為雜交育種的材料，需要首先考察誘變的單核體菌株是否具有遺傳性狀變異，然後再将突變的單核體菌絲與可親和的單核體菌絲進行雜交。對于誘變獲得的單核體及其雜交獲得的雜交子，都必須進行培養特性、農藝性狀和商品性狀考察，挑選優良的突變株材料或雜交子。待雜交子産生子實體或組織體之後，進行組織分離獲得純培養菌株，并經過多次栽培試驗和示範，獲得遺傳穩定的突變體菌株。