實驗原理
考馬斯亮藍法測定蛋白質濃度,是利用蛋白質中的堿性氨基酸(特别是精氨酸)和芳香族氨基酸殘基與考馬斯亮藍G-250染料在堿性條件下可以結合的原理,使染料的最大吸收峰位置由465 nm變為595 nm,溶液顔色也由棕黑色變為藍色,這樣通過分光光度法可以定量測定微量蛋白的濃度。這種蛋白質測定法快速、靈敏,是目前靈敏度最高的蛋白質測定方法。
材料與儀器
1.儀器
- 10 mL試管6個
- 試管架1個
- 0.5 mL、1 mL、5 mL移液管分别2個
- 恒溫水浴箱
- 分光光度計
2.材料與試劑
- 待測蛋白質溶液:白菜勻漿液
- 考馬斯亮藍試劑:考馬斯亮藍G-250 100 mg溶于50 mL 95%乙醇中,加入100 mL 85%磷酸,用蒸餾水稀釋至1000 mL。
- 标準蛋白質溶液:結晶牛血清蛋白,預先經微量凱氏定氮法測定蛋白質含量,根據其純度用0.15 mol/L NaCI配制成1 mg/mL蛋白溶液。
操作步驟
(1)白菜勻漿液的制備:稱取5g白菜葉,用水洗淨,吸幹表面水分,剪碎,加入0.05 mol/L Tris-HCl, pH 7.4 磷酸鹽緩沖液PBS,0℃~4℃下冰浴研磨15~20 min,12000 r/min冷凍離心10 min,上清即為白菜葉的溶性蛋白溶液。
(2)制備标準曲線:按照下表所示條件進行混合搖勻後,在25℃下保溫10 min,靜置5min,以第一管為空白,在波長595 nm下測定其吸光度值,以标準蛋白的濃度對應吸光度值做線性回歸方程。
(3)樣品中蛋白質的測定:樣品适當稀釋後,另取一幹淨試管,加入稀釋樣品1.0 mL及考馬斯亮藍試劑5.0 mL,混勻,在25℃下保溫10 min後,靜置5 min,于波長595 nm下測定其吸光度值,代入标準曲線中,計算出蛋白質的含量。
注意事項
(1)合理稀釋待測蛋白溶液,使測定值在标準曲線的線性範圍内。
(2)控制好平行之間的标準誤差。分光光度計檢測吸光度時,至少設置兩個平行孔,取平均值。
(3)正确使用分光光度計。
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